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質(zhì)粒提取過程中需要注意的細節(jié)

更新時間:2022-03-24瀏覽:5539次

質(zhì)粒(plasmid) 廣泛存在于生物界,從細菌、放線菌、絲狀真菌、大型真菌、酵母到植物,甚至人類機體中都含有。質(zhì)粒是細菌、酵母菌和放線菌等生物中染色體(或擬核)以外的DNA分子,存在于細胞質(zhì)中(但酵母除外,酵母的2 μm質(zhì)粒存在于細胞核中),具有自主復制能力,使其在子代細胞中也能保持恒定的拷貝數(shù),并表達所攜帶的遺傳信息,是閉合環(huán)狀的雙鏈DNA分子。質(zhì)粒具有自主復制能力,使其在子代細胞中也能保持恒定的拷貝數(shù),并表達所攜帶的遺傳信息。細菌質(zhì)粒是DNA重組技術(shù)中常用的載體。載體是指把一個有用的外源基因通過基因工程手段,送進受體細胞中去進行增殖和表達的工具。將某種目標基因片段重組到質(zhì)粒中,構(gòu)成重組基因或重組體。


目前有許多方法用于從細菌中提純質(zhì)粒 DNA , 這些方法都主要包括有以下 3 個步驟:

1. 細菌培養(yǎng)物的生長。

2. 細菌的收獲和裂解

3. 質(zhì)粒 DNA 的純化。


(一)細菌培養(yǎng)物的生長

從瓊脂平板上挑取一個單菌落,接種到培養(yǎng)物中 (有含有行當抗生素的液體培養(yǎng)基中生長),然后從中純化質(zhì)粒,質(zhì)粒的提純幾乎總是如此。現(xiàn)在使用的許多質(zhì)粒載體(如 pUC 系列)都能復制到很高的拷貝數(shù),惟致只要將培養(yǎng)物放在標準 LB 培養(yǎng)基中生長到對數(shù)晚期,就可以大量提純質(zhì)粒。此時,不必造反性地擴增質(zhì)粒 DNA 。然而,較長一代的載體 (如 pBR322) 由于不能如此自由地復制, 所以需要在得到部分生長的細菌培養(yǎng)物中加入氯霉素繼續(xù)培養(yǎng)若干小時, 以便對質(zhì)粒進行性擴增。 氯霉素可抑制宿主的蛋白質(zhì)合成, 結(jié)果阻止了細菌染色體的復制, 然而,松弛型質(zhì)粒仍可繼續(xù)復制, 在若干小時內(nèi), 其拷貝數(shù)持續(xù)遞增。 這樣,像 pBR 322-類的質(zhì)粒,從經(jīng)氯霉素處理和未經(jīng)處理的培養(yǎng)物中提取質(zhì)粒的產(chǎn)量迥然不同,前者大為增高。多年來,加入足以*抑制蛋白質(zhì)合成的氯霉素 μg/ml) 已成為標準的操作、用該方法提取的質(zhì)粒 DNA 量,對于分子克隆中幾乎所有想象到的工作任務(wù)。


(二)細菌的收獲和裂解

細菌的收獲可通過離心來進行, 而細菌的裂解則可以采用多種方法中的任意一種, 這些方法包括用非離子型或離子型去污劑、 有機溶劑或堿進行處理及用加熱處理等。 選擇哪一種方法取決于3個因素:質(zhì)粒的大小、小腸桿菌菌株及裂解后用于純化質(zhì)粒 DNA 的技術(shù)。

1)大質(zhì)粒 (大于 15kb) 容易受損, 故應(yīng)采用漫和裂解法從細胞中釋放出來。 將細菌懸于蔗糖等滲溶液中,然后用溶菌酶和 EDTA 進生處理,破壞細胞壁和細胞外膜,再加入 SDS 一類去污劑溶解球形體。 這種方法最大限度地減小了從具有正壓的細菌部把質(zhì)粒釋放出來所需要的作用力。

2)可用更劇烈的方法來分離小質(zhì)粒。在加入 EDTA 后,有時還在加入溶菌酶后讓細菌

暴露于去污劑, 通過煮沸或堿處理使之裂解。 這些處理可破壞堿基配對, 故可使宿主的線狀染色體 DNA 變性,但閉環(huán)質(zhì)粒 DNA 鏈由于處于拓撲纏繞狀態(tài)而不能彼此分開。當條件恢復正常時,質(zhì)粒 DNA 鏈迅速得到準確配置,重新形成*天然的超螺旋分子。

3)一些大腸桿菌菌株 (如 HB101 的一些變種衍生株 ) 用去污劑或加熱裂解時可釋放相對大量的糖類, 當隨后用氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心進行質(zhì)粒純化時它們會惹出麻煩。 糖類會在梯度中緊靠超螺旋質(zhì)粒 DNA 所占位置形成一致密的、模糊的區(qū)帶。因此很難避免質(zhì)粒 DNA 內(nèi)污染有糖類,而糖類可抑制多種限制酶的活性。 故從諸 如 HB101 和 TG1 等大腸桿菌蓖株中大量制備質(zhì)粒時,不宜使用煮沸法。

4)當從表達內(nèi)切核酸酶 A 的大腸桿菌菌株 (endA+ 株,如 HB101) 中小量制備質(zhì)粒時,建議不使用煮沸法。 因為煮沸不能*滅活內(nèi)切核酸酶 A,以后在溫育 (如用限制酶消化 )時,質(zhì)粒 DNA 會被降解。但如果通過一個附加步驟 (用酚:氯仿進行抽提 )可以避免此問題。



(三)質(zhì)粒 DNA 的純化

常使用的所有純化方法都利用了質(zhì)粒 DNA 相對較小及共價閉合環(huán)狀這樣兩個性質(zhì)。例如,用氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心分離質(zhì)粒和染色體 DNA 就取決于溴化乙錠與線狀以及與閉環(huán) DNA 分子的結(jié)合量有所不同。 溴化乙錠通過嵌入奮不顧身堿基之間而與 DNA 結(jié)合,進而使雙螺旋解旋。由此導致線狀 DNA 的長度有所增加,作為補償,將在閉環(huán)質(zhì)粒 DNA 中引入超螺旋單位。最后,超螺旋度大為增加, 從而阻止了溴化乙錠分了的繼續(xù)嵌入。但線狀分子不受此限, 可繼續(xù)結(jié)合更多的染料, 直至達到飽和 ( 每2個堿基對大約結(jié)合1個溴化乙錠分子 ) 。由于染料的結(jié)合量有所差別,線狀和閉環(huán) DNA 分了在含有飽和量溴化乙錠的氯化銫度中的浮力密度也有所不同。 多年來, 氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心已成為制備大量質(zhì)粒 DNA 的方法。然而該過程既昂貴又費時,為此發(fā)展了許多替代方法。其中主要包括利用離子交換層析、凝膠過濾層析、分級沉淀等分離質(zhì)粒 DNA 和宿主 DNA 的方法。本實驗室采用離子交換層析法已可得到*純度的質(zhì)粒。


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